Bureaucrates, Administrateurs, writer
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Conservation dans un endroit noir et sec (type boite à biscuit ou bas de frigo avec un sachet de silice) quasiment impérissable. | Conservation dans un endroit noir et sec (type boite à biscuit ou bas de frigo avec un sachet de silice) quasiment impérissable. | ||
==Réaliser une Seringue de spores== | |||
Matériel nécessaire | |||
* Scalpel ou couteau | |||
* Seringue stérile | |||
* Empreinte de spores | |||
* Eau stérile (stérile mais pas déminéralisée) eau robinet bouillie 10 mn. | |||
* Petit récipient type shooter pour recevoir le mélange eau stérile/spores | |||
Étapes pour réaliser la seringue | |||
* Verser l’eau stérile dans le shooter | |||
* Sortir l’empreinte du zip et décoller les spores avec le scalpel en versant dans le shooter. | |||
* A l’aide de la seringue, pomper et videz le contenu du verre plusieurs pour mélanger les spores dans le liquide. | |||
* Une fois la seringue remplie, la placer dans un sachet zip | |||
* Attendre 24h 48h ou 72h selon votre patience température ambiante, noir et au sec pour que les spores se réhydratent. | |||
Après l’attente, placer le sachet zip au frigo | |||
Conservation : 1 an max | |||
==Réaliser une Culture Liquide== | |||
Avantages par rapport à la seringue de spores : | |||
* Pas besoin d’attendre l’hydratation des spores (gain de temps si objectif rentabilité) | |||
* Création d’un mycélyum mono spore possible (à partir d’un seul champignon/clone) contrairement à une seringue qui produira une culture multispores (gain de productivité si objectif rentabilité) | |||
Matériel nécessaire | |||
* Sirop de glucose (grenadine, etc…) | |||
* Bocaux pour culture liquide | |||
* Fait tout ou autoclave | |||
* Morceaux de verre | |||
4 à 7% de glucides (en volume) dans de l'eau stérile mais pas déminéralisée. | |||
Mesurer les dosages : bocal d’1L = 96 cl d’eau + 4 cl de sirop | |||
4 cl de sirop égale 8 cuillères à café égale environ 3 cuillères à soupe | |||
- Mélanger l’eau, le glucose et les morceaux de verre dans le bocal prévu pour la CL. Les morceaux de verre serviront plus tard pour « casser » le mycélium et ainsi accélérer sa croissance. | |||
* Recouvrir chaque trou avec deux couches de ruban micropore et recouvrir le couvercle avec 2 feuilles d'aluminium. | |||
* A la cocotte minute ou au fait-tout, amener à ébullition et laisser les pots mijoter pendant 20 mn pas plus pour ne pas « cuire » le sucre. | |||
Étapes d’inoculation pour créer le mycélium dans la CL | |||
Pour ce faire, plusieurs possibilités : | |||
* Injecter quelques gouttes (environ 2 ml) de spores liquides pour faire de la CL qu'on appellera multispores (moins productive mais plus simple). | |||
* Injecter quelques gouttes d'une autre CL sous forme de seringue pour la dupliquer | |||
* Ouvrir le pot et mettre directement dedans un morceau de sclérote ou de champignon. Idéalement devant un flux laminaire ou éventuellement glovebox si vous travaillez vraiment rapidement et proprement, ou encore à la flamme bec bunsen. | |||
* Pomper genre 20ml de CL vierge, injecter cela dans un pot de grain 100% colonisé et préalablement séparé, bien mélanger et ressucer la CL qui contient maintenant du bon mycélium tout frais et garanti sans contamination (si du moins on est très propre pendant cette opération, qu'on stérilise bien l'aiguille à la flamme et qu'on nettoie bien les ports d'injection à l'alcool à 70°) | |||
Etapes Finales | |||
* Mettre les pots dans un incubateur à la température voulue pour la variété cultivée (26°C pour les sclérotes - Ps. Mexicana et 28°C pour les Ps.Cubensis) | |||
* Mélanger la CL avec un mouvement de rotation 2 ou 3x par jour. | |||
En moins d'une semaine, la CL est 100% colonisée, prête à être sucée dans une seringue et injectée dans des pots de grain - un pot d'1L de grain avec de la CL est colonisé en a peu entre 7 et 10j !) | |||
Pour plus d'info voir le tutoriel [https://www.psychoactif.org/forum/2020/04/24/Tutoriel-preparer-Culture-Liquide_51803_1.html#divx Réaliser une culture liquide] |