Première culture de NATALENSIS

Bravo bob, le substrat leur plais vraiment.

Dans le sujet tu dis que la culture liquide n'a pas fonctionné, mais du coup tu as fais comment à partir des spores ? Sur géloses, et ensuite sur grains ?

Salut Fahrenheit,
Oui, ils se développent bien, c'est un vrai plaisir à cultiver.

J'ai commencé avec une empreinte achetée chez Free Spore Espana pour 10 euros. Maintenant, dès que je trouve un beau spécimen, je fais de nouvelles empreintes pour l'avenir.

J'utilise toujours la même méthode : je prépare une seringue de spores à partir d’une empreinte, que je laisse s'hydrater pendant 24 heures. Ensuite, j’injecte la solution dans des bocaux contenant des grains de maïs, stérilisés à la cocotte-minute par tyndallisation (30 minutes par jour, pendant trois jours).

Pour le substrat, je pasteurise la fibre de coco.
Enfin pour le pain je fais un ratio 1/1 de maïs/coco.

Pour les Natalensis, j’ai également ajouté pour la première fois une fine couche de (pseudo) casing composée de coco et de vermiculite pour favoriser la fructification.

À mes débuts, j'avais réussi une culture liquide de Golden Teacher en partant de mycélium cultivé sur gélose, mais cette technique n'a pas fonctionné avec les Natalensis. Je vais réessayer...

Récemment, j'ai tenté une manipulation un peu risquée : Je n'ai pas de hotte, je travaille au bec Bunsen et j'ai mis un minuscule morceau de champignon dans un flacon de culture liquide.
Pour l'instant, l'un des deux bocaux semble démarrer, avec un léger 'voile de poussière' en suspension. Je prendrai une photo demain."

Dernière modification par www bob l'éponge (11 novembre 2024 à  22:18)

Merci pour les précisions.
Mais le fait de faire germer des spores est aussi risqué que de cloner un champi, enfin je trouve.
Jusqu'à présent j'ai fais des empreintes de spores et là je tente de les faire germer sur des géloses, on verra.
Pour le clonage en culture liquides ça pousse quasiment à chaque fois, mais on ne distingue pas les contaminations dans la CL, c'est une fois dans le grains que je constate si c'est contaminé ou pas.
Il y a aussi le H2O2 à 3% qui est pas mal, je trempe le morceau de champi dedans pour le "désinfecter" mais ça ne fonctionne pas à chaque fois, et je n'ai pas encore essayer de mettre du H2O2 directement en CL pour les rendre plus résistantes.

L'idée est de gratter ce mycélium en surface pour l'inoculer dans de la culture liquide, tout ça dans un environnement stérile, perso j'utilise le bec bunsen:

Je mets la flotte dans le pots d'aggar :

ça me fait une belle seringue de mycélium en morceaux :

Voilà la culture liquide à mettre en incubation :

?? ils sont bleus de ouf sa doit taper fort

Merci Lulu,

C'est vraiment pour développer des compétences.
Et malgré trois transferts, le mycélium est resté peu rhizomorphique, mais c'est pour l'amour de la champiliculture.

www bob l'éponge a écrit

Merci Lulu,

C'est vraiment pour développer des compétences.
Et malgré trois transferts, le mycélium est resté peu rhizomorphique, mais c'est pour l'amour de la champiliculture.

De toute façon il s'agit d'un clone.
Donc tu n'as pas besoin d'isoler une génétique d'une autre.

Même avec de multiples transferts, tu obtiendras toujours le même mycélium.

Seul son comportement et son apparence peuvent changer un peu suivant le milieu de culture plus ou moins nutritif sur lequel tu le cultives.

Aussi, j'ai cru comprendre qu'un mycélium rysomorphique ne produit pas forcément plus ou plus rapidement qu'un mycélium qui ne l'est pas.

Au passage, je te présente un de mes clones de Natalensis :

C'est assez ressemblant au tien.
D'ailleurs j'ai des pains qui sont en train de coloniser à partir du clone cultivé sur millet (inoculé avec culture liquide du clone) avant mélange avec CVG.

A+

Dernière modification par lulushroom (18 décembre 2024 à  21:05)

48H après inoculation du mycélium sur agar
ça a l'air de bien démarrer